化脓性脑膜炎患儿外周血NKG2C和GZMB标记NK细胞亚群变化的临床意义

doi:10.3969/j.issn.1673-8640.2023.05.011

检验医学 ›› 2023, Vol. 38 ›› Issue (5): 466-474.DOI: 10.3969/j.issn.1673-8640.2023.05.011

化脓性脑膜炎患儿外周血NKG2C和GZMB标记NK细胞亚群变化的临床意义

杨泽¹, 谢丽丽², 田静¹, 许同同³, 周国庆⁴, 刘宝军⁵, 武慧慧¹()

1.山东第一医科大学第二附属医院输血科，山东泰安 271000
2.山东第一医科大学第二附属医院肾内科，山东泰安 271000
3.山东第一医科大学第二附属医院检验科，山东泰安 271000
4.山东第一医科大学第二附属医院神经内科，山东泰安 271000
5.山东第一医科大学第二附属医院放疗科，山东泰安 271000

收稿日期:2021-03-18 修回日期:2022-03-18 出版日期:2023-05-30 发布日期:2023-08-07
通讯作者: 武慧慧，E-mail：huihuiwu0518@163.com。
作者简介:杨泽，男，1986年生，硕士，主管技师，主要从事自然杀伤细胞的免疫学功能研究。
基金资助:
山东省中医药科技发展计划项目(20190358)

Change and significance of NKG2C and granzyme B labeled NK cell subsets in peripheral blood of children with purulent meningitis

YANG Ze¹, XIE Lili², TIAN Jing¹, XU Tongtong³, ZHOU Guoqing⁴, LIU Baojun⁵, WU Huihui¹()

1. Department of Blood Transfusion，the Second Affiliated Hospital of Shandong First Medical University，Taian 271000，Shandong，China
2. Department of Nephrology，the Second Affiliated Hospital of Shandong First Medical University，Taian 271000，Shandong，China
3. Department of Clinical Laboratory，the Second Affiliated Hospital of Shandong First Medical University，Taian 271000，Shandong，China
4. Department of Internal Medicine Neurology，the Second Affiliated Hospital of Shandong First Medical University，Taian 271000，Shandong，China
5. Department of Radiotherapy，the Second Affiliated Hospital of Shandong First Medical University，Taian 271000，Shandong，China

Received:2021-03-18 Revised:2022-03-18 Online:2023-05-30 Published:2023-08-07

摘要/Abstract

摘要：

目的探讨化脓性脑膜炎（PM）患儿外周血自然杀伤细胞受体2C（NKG2C）和颗粒酶B（GZMB）标记自然杀伤（NK）细胞亚群的变化特征及其临床意义。方法选取PM患儿52例（PM组），根据出院时的格拉斯哥临床结局评分（GOS）分为预后良好组（44例）和预后不良组（8例）。以非中枢感染性疾病患儿52例作为对照组。采用流式细胞术检测所有患儿治疗前和PM患儿治疗后的外周血NK细胞各亚群[NKG2C^-γ-干扰素（IFN-γ）⁺、NKG2C⁺INF-γ⁺、NKG2C⁺INF-γ^-、NKG2C^-GZMB^+、NKG2C⁺GZMB^+、NKG2C⁺GZMB^-]。收集所有患儿脑脊液常规指标[总蛋白（TP）、葡萄糖（Glu）、氯离子（Cl^-）、白细胞（WBC）计数]和外周血常规指标[WBC计数、中性粒细胞百分比（NEUT%）、降钙素原（PCT）、高敏C反应蛋白（hs-CRP）]检测结果。采用Spearman相关分析评估各项指标之间的相关性。采用受试者工作特征曲线（ROC）评价各项指标诊断PM和判断预后的效能。结果 PM组治疗前NKG2C⁺、NKG2C^-GZMB⁺、NKG2C⁺GZMB⁺和NKG2C⁺GZMB^- NK细胞百分比均显著高于对照组（P<0.05），总NK细胞百分比显著低于对照组（P<0.05）。2个组均未检测到NKG2C^-INF-γ⁺和NKG2C⁺INF-γ⁺ NK细胞。Spearman相关分析结果显示，NKG2C^-GZMB⁺ NK细胞百分比与脑脊液WBC计数、TP和血清PCT呈正相关（r值分别为0.286、0.558、0.740，P<0.05），与脑脊液Glu呈负相关（r=-0.389，P<0.05）。NKG2C⁺GZMB⁺ NK细胞百分比与脑脊液WBC计数、TP和外周血WBC计数、血清PCT呈正相关（r值分别为0.509、0.539、0.549、0.577，P<0.05），与脑脊液Glu呈负相关（r=-0.391，P<0.05）。NKG2C⁺GZMB^- NK细胞百分比与脑脊液Glu呈正相关（r=0.624，P<0.05），与脑脊液TP呈负相关（r=-0.328，P<0.05）。PM组治疗后总NK细胞百分比和绝对值均高于治疗前（P<0.05）。与治疗前比较，预后良好组治疗后NKG2C^-GZMB⁺和NKG2C⁺GZMB⁺ NK细胞百分比降低（P<0.05），NKG2C⁺GZMB^- NK细胞百分比升高（P<0.05）；预后不良组治疗后NKG2C⁺GZMB⁺ NK细胞百分比升高（P<0.05）。ROC曲线分析结果显示，NKG2C^-GZMB⁺ NK细胞百分比诊断PM的效能最高，曲线下面积（AUC）为0.980，最佳临界值为8.93%，敏感性为92.31%，特异性为98.08%；治疗后NKG2C⁺GZMB^- NK细胞判断PM患儿预后不良的效能最高，AUC为0.989，最佳临界值为5.51%，敏感性为100.00%，特异性为97.73%。结论外周血NKG2C^-GZMB⁺ NK细胞对PM诊断有较好的价值，NKG2C⁺GZMB^- NK细胞对PM的预后评估有较高的价值。

关键词: 自然杀伤细胞受体2C, 颗粒酶B, 自然杀伤细胞, 化脓性脑膜炎

Abstract:

Objective To investigate the change characteristics and clinical significance of natural killer cell receptor 2C（NKG2C） and granzyme B（GZMB） labeled natural killer（NK） cell subsets in peripheral blood of children with purulent meningitis（PM）. Methods Totally，52 children with PM and 52 control children with non-central infectious diseases were enrolled. The children with PM were classified into good prognosis group（44 cases） and poor prognosis group（8 cases） according to the Glasgow Outcome Scale on discharge. NK cell subsets [NKG2C^- gamma-interferon gamma（INF-γ）⁺，NKG2C⁺INF-γ⁺，NKG2C⁺INF-γ^-，NKG2C^-GZMB⁺，NKG2C⁺GZMB⁺，NKG2C⁺GZMB^-] were determined by flow cytometry. The results of cerebrospinal fluid white blood cell（WBC） count，total protein（TP），glucose（Glu） and chlorine（Cl^-），peripheral blood WBC count，the percentage of neutrophil（NEUT%），serum procalcitonin（PCT） and high-sensitivity C-reactive protein（hs-CRP） were collected as well. Spearman rank correlation test was used to analyze the correlations. Receiver operating characteristic（ROC）curves were established to evaluate the values of the indicators in the diagnosis and prognosis of PM. Results The levels of NKG2C⁺，NKG2C^-GZMB⁺，NKG2C⁺GZMB⁺ and NKG2C⁺GZMB^- in PM group were higher than those in control group（P<0.05），and total NK cell percentage was lower than that in control group（P<0.05）. There was no NKG2C^-INF-γ⁺ and NKG2C⁺INF-γ⁺ NK cell in the 2 groups. The percentage of NK2G^-GZMB⁺ NK cells was positively correlated with cerebrospinal fluid WBC count，TP and serum PCT（r values were 0.286，0.558 and 0.740，P<0.05），and it was negatively correlated with cerebrospinal fluid Glu（r=-0.389，P<0.05）. The percentage of NKG2C⁺GZMB⁺ NK cells was positively correlated with cerebrospinal fluid WBC count，TP，peripheral blood WBC count and serum PCT（r=0.509，0.539，0.549 and 0.577，P<0.05），and it was negatively correlated with cerebrospinal fluid Glu（r=-0.391，P<0.05）. NKG2C⁺ GZMB^- NK cell percentage was positively correlated to cerebrospinal Glu level（r=0.624，P<0.05），and it was negatively correlated to cerebrospinal TP（r=-0.328，P<0.05）. The percentage and absolute value of total NK cells in PM group after treatment were higher than those before treatment（P<0.05）. Compared with before treatment，the percentage of NKG2C^-GZMB⁺ and NKG2C⁺GZMB⁺ NK cells in good prognosis group were decreased after treatment（P<0.05），while the percentage of NKG2C⁺GZMB^- NK cells was increased（P<0.05）. The percentage of NKG2C⁺GZMB⁺NK cells in poor prognosis group after treatment was increased（P<0.05）. ROC curve analysis results showed that NKG2C^-GZMB⁺ NK cell percentage had the highest diagnostic efficiency for PM，with the area under curve（AUC） of 0.980，the optimal cut-off value of 8.93%，the sensitivity of 92.31%，and the specificity of 98.08%. After treatment，NKG2C⁺GZMB^- NK cells had the highest efficiency in predicting poor prognosis in children with PM，with the AUC of 0.989，the optimal cut-off value of 5.51%，the sensitivity of 100.00%，and the specificity of 97.73%. Conclusions NKG2C^-GZMB⁺ NK cell subsets have a good value for the early diagnosis in children with PM. NKG2C⁺GZMB^- NK cells have a certain clinical value for prognostic prediction of PM.

Key words: Natural killer cell receptor 2C, Granzyme B, Natural killer cell, Purulent meningitis

中图分类号:

R446.1

杨泽, 谢丽丽, 田静, 许同同, 周国庆, 刘宝军, 武慧慧. 化脓性脑膜炎患儿外周血NKG2C和GZMB标记NK细胞亚群变化的临床意义[J]. 检验医学, 2023, 38(5): 466-474.

YANG Ze, XIE Lili, TIAN Jing, XU Tongtong, ZHOU Guoqing, LIU Baojun, WU Huihui. Change and significance of NKG2C and granzyme B labeled NK cell subsets in peripheral blood of children with purulent meningitis[J]. Laboratory Medicine, 2023, 38(5): 466-474.

图/表 11

参考文献 18

[1]	VOYTENKOV V B, VILNITZ A A, SKRIPCHENKO N V, et al. Quantitative electroencephalography indicators in children with acute purulent meningitis[J]. Neurosci Behav Physiol, 2022, 52(2):315-318. DOI
[2]	HE H, GENG T, CHEN P, et al. NK cells promote neutrophil recruitment in the brain during sepsis-induced neuroinflammation[J]. Sci Rep, 2016, 6:27711. DOI PMID
[3]	HAYASHI T, NAGAI S, FUJII H, et al. Critical roles of NK and CD8+ T cells in central nervous system listeriosis[J]. J Immunol, 2009, 182(10):6360-6368. DOI PMID
[4]	BEAULIEU A M. Memory responses by natural killer cells[J]. J Leukoc Biol, 2018, 104(6):1087-1096. DOI URL
[5]	LUETKE-EVERSLOH M, HAMMER Q, DUREK P, et al. Human cytomegalovirus drives epigenetic imprinting of the IFNG locus in NKG2Chi natural killer cells[J]. PLoS Pathog, 2014, 10(10):e1004441. DOI URL
[6]	CHOREÑO-PARRA J A, JIMÉNEZ-ÁLVAREZ L A, MALDONADO-DÍAZ E D, et al. Phenotype of peripheral nk cells in latent,active,and meningeal tuberculosis[J]. J Immunol Res, 2021, 2021:5517856.
[7]	RIBES S, NESSLER S, HEIDE E C, et al. The early adaptive immune response in the pathophysiological process of pneumococcal meningitis[J]. J Infect Dis, 2017, 215(1):150-158. DOI PMID
[8]	江载芳, 申昆玲, 沈颖. 诸福棠实用儿科学[M]. 8版. 北京: 人民卫生出版社, 2015.
[9]	PELTOLA H, PELKONEN T, ROINE I, et al. Predicting outcome of childhood bacterial meningitis with a single measurement of C-reactive protein[J]. Pediatr Infect Dis J, 2016, 35(6):617-621. DOI PMID
[10]	VELISSARIS D, PINTEA M, PANTZARIS N, et al. The role of procalcitonin in the diagnosis of meningitis:a literature review[J]. J Clin Med, 2018, 7(6):148. DOI URL
[11]	SONG T, LI L, SU B, et al. NKG2C+ natural killer cell function improves the control of HBV replication in individuals with acute HIV infection coinfected with HBV[J]. Medicine(Baltimore), 2020, 99(18):e20073.
[12]	GARAND M, GOODIER M, OWOLABI O, et al. Functional and phenotypic changes of natural killer cells in whole blood during Mycobacterium tuberculosis infection and disease[J]. Front Immunol, 2018, 9:257. DOI URL
[13]	KOBYZEVA P A, STRELTSOVA M A, EROKHINA S A, et al. CD56^dim CD57^- NKG2C⁺ NK cells retaining proliferative potential are possible precursors of CD57⁺ NKG2C⁺ memory-like NK cells[J]. J Leukoc Biol, 2020, 108(4):1379-1395. DOI URL
[14]	FOREL J M, CHICHE L, THOMAS G, et al. Phenotype and functions of natural killer cells in critically-ill septic patients[J]. PLoS One, 2012, 7(12):e50446. DOI URL
[15]	GIANNIKOPOULOS G, ANTONOPOULOU A, KALPAKOU G, et al. The functional role of natural killer cells early in clinical sepsis[J]. APMIS, 2013, 121(4):329-336. DOI PMID
[16]	BLOM K, CUAPIO A, SANDBERG J T, et al. Cell-mediated immune responses and immunopathogenesis of human tick-borne encephalitis virus-infection[J]. Front Immunol, 2018, 9:2174. DOI PMID
[17]	MA L, LI Q, CAI S, et al. The role of NK cells in fighting the virus infection and sepsis[J]. Int J Med Sci, 2021, 18(14):3236-3248. DOI PMID
[18]	MAUCOURANT C, FILIPOVIC I, PONZETTA A, et al. Natural killer cell immunotypes related to COVID-19 disease severity[J]. Sci Immunol, 2020, 5(50):eabd6832. DOI URL

组别	例数	脑脊液
组别	例数	WBC计数/（×10⁶/L）	Glu/（mmol/L）	TP/（g/L）	Cl^-/（mmol/L）
PM组	52	268.00（38.75~1 254.00）	2.05（0.96~2.74）	0.91（0.52~1.90）	118.30±6.96
对照组	52	8.50（3.25~52.50）	3.25（3.02~3.51）	0.18（0.15~0.23）	124.00±2.56
统计值		-8.12	-6.76	-7.66	5.84
P值		<0.001	<0.001	<0.001	<0.001
组别		外周血
组别		hs-CRP/（mg/L）	PCT/（ng/mL）	WBC计数/（×10⁹/L）	NEUT%
PM组		77.65（23.15~156.80）	1.23（0.24~11.50）	12.59（8.82~17.30）	70.40（44.48~83.53）
对照组		13.30（5.02~24.23）	0.12（0.06~0.34）	6.32（4.67~8.43）	47.95（32.75~60.63）
统计值		-6.23	-3.74	-5.98	-3.53
P值		<0.001	<0.001	<0.001	<0.001

组别	例数	脑脊液
组别	例数	WBC计数/（×10⁶/L）	Glu/（mmol/L）	TP/（g/L）	Cl^-/（mmol/L）
PM组	52	268.00（38.75~1 254.00）	2.05（0.96~2.74）	0.91（0.52~1.90）	118.30±6.96
对照组	52	8.50（3.25~52.50）	3.25（3.02~3.51）	0.18（0.15~0.23）	124.00±2.56
统计值		-8.12	-6.76	-7.66	5.84
P值		<0.001	<0.001	<0.001	<0.001
组别		外周血
组别		hs-CRP/（mg/L）	PCT/（ng/mL）	WBC计数/（×10⁹/L）	NEUT%
PM组		77.65（23.15~156.80）	1.23（0.24~11.50）	12.59（8.82~17.30）	70.40（44.48~83.53）
对照组		13.30（5.02~24.23）	0.12（0.06~0.34）	6.32（4.67~8.43）	47.95（32.75~60.63）
统计值		-6.23	-3.74	-5.98	-3.53
P值		<0.001	<0.001	<0.001	<0.001

项目	AUC（95%CI ^①）	P值	最佳临界值	敏感性/%	特异性/%
脑脊液Cl^-	0.815（0.730~0.900）	<0.000 1	120.00 mmol/L	61.54	94.23
脑脊液Glu	0.885（0.816~0.953）	<0.000 1	2.80 mmol/L	78.85	92.31
脑脊液TP	0.936（0.887~0.984）	<0.000 1	0.34 g/L	86.54	92.31
脑脊液WBC计数	0.899（0.956~1.000）	<0.000 1	95.00×10⁶/L	73.08	100.00
血清PCT	0.823（0.743~0.903）	<0.000 1	0.16 ng/L	84.62	65.38
血清hs-CRP	0.790（0.702~0.878）	<0.000 1	21.30 mg/L	75.00	73.08
外周血WBC计数	0.840（0.765~0.915）	<0.000 1	9.47×10⁹/L	73.08	84.62
外周血NEUT%	0.701（0.599~0.802）	0.000 4	65.15%	59.62	80.77
NKG2C^-GZMB⁺ NK细胞百分比	0.980（0.956~1.000）	<0.000 1	8.93%	92.31	98.08
NKG2C⁺GZMB⁺ NK细胞百分比	0.857（0.778~0.935）	<0.000 1	4.46%	73.08	92.31
NKG2C⁺GZMB^- NK细胞百分比	0.909（0.855~0.964）	<0.000 1	3.86%	84.62	86.54

项目	AUC（95%CI ^①）	P值	最佳临界值	敏感性/%	特异性/%
脑脊液Cl^-	0.815（0.730~0.900）	<0.000 1	120.00 mmol/L	61.54	94.23
脑脊液Glu	0.885（0.816~0.953）	<0.000 1	2.80 mmol/L	78.85	92.31
脑脊液TP	0.936（0.887~0.984）	<0.000 1	0.34 g/L	86.54	92.31
脑脊液WBC计数	0.899（0.956~1.000）	<0.000 1	95.00×10⁶/L	73.08	100.00
血清PCT	0.823（0.743~0.903）	<0.000 1	0.16 ng/L	84.62	65.38
血清hs-CRP	0.790（0.702~0.878）	<0.000 1	21.30 mg/L	75.00	73.08
外周血WBC计数	0.840（0.765~0.915）	<0.000 1	9.47×10⁹/L	73.08	84.62
外周血NEUT%	0.701（0.599~0.802）	0.000 4	65.15%	59.62	80.77
NKG2C^-GZMB⁺ NK细胞百分比	0.980（0.956~1.000）	<0.000 1	8.93%	92.31	98.08
NKG2C⁺GZMB⁺ NK细胞百分比	0.857（0.778~0.935）	<0.000 1	4.46%	73.08	92.31
NKG2C⁺GZMB^- NK细胞百分比	0.909（0.855~0.964）	<0.000 1	3.86%	84.62	86.54

组别	例数	PCT/（ng/mL）	hs-CRP/（mg/L）	外周血WBC计数/（×10⁹/L）	NEUT%
预后良好组	44
治疗前		0.70（0.18~10.23）	68.90（17.45~165.75）	11.81（7.76~17.3）	66.50（43.23~85.48）
治疗后		0.06（0.04~0.09）	2.07（0.76~7.43）	6.92（6.09~8.30）	47.10（34.88~63.85）
Z值		-6.655	-6.890	-5.262	-3.046
P值		<0.001	<0.001	<0.001	<0.001
预后不良组	8
治疗前		8.84（4.22~11.62）	35.15（29.20~52.83）	13.71（10.03~17.28）	77.05（71.13~83.20）
治疗后		5.03（3.07~5.81）^#	27.15（16.68~32.71）^#	11.03（9.59~11.90）^#	78.35（76.70~82.88）^#
Z值		-1.680	-1.890	-1.470	-0.525
P值		0.092	0.059	0.141	0.600
组别		总NK细胞百分比/%	NKG2C^-GZMB⁺ NK细胞百分比/%	NKG2C⁺ GZMB⁺ NK细胞百分比/%	NKG2C⁺ GZMB^- NK细胞百分比/%
预后良好组
治疗前		8.64（6.70~11.55）	21.85（17.83~29.35）	6.16（4.87~8.10）	2.95（1.88~3.79）
治疗后		10.89（4.74~16.09）	3.83（3.24~4.36）	1.59（1.02~2.10）	15.26（12.59~20.15）
Z值		-1.494	-8.053	-7.978	-8.836
P值		0.135	<0.001	<0.001	<0.001
预后不良组
治疗前		1.56（1.11~3.91）^*	9.53（7.61~11.46）^*	1.38（0.81~2.09）^*	2.06（1.64~3.33）^*
治疗后		4.13（3.18~5.60）^#	10.87（8.04~14.63）^#	3.42（2.34~3.93）^#	2.47（2.02~2.84）^#
Z值		-2.310	-0.840	-2.415	-0.735
P值		0.021	0.401	0.016	0.462

化脓性脑膜炎患儿外周血NKG2C和GZMB标记NK细胞亚群变化的临床意义

Change and significance of NKG2C and granzyme B labeled NK cell subsets in peripheral blood of children with purulent meningitis

RichHTML

PDF (PC)

可视化

摘要/Abstract

引用本文

使用本文

图/表 11

参考文献 18

相关文章 15

编辑推荐

Metrics

项目	AUC（95%CI）	P值	最佳临界值	敏感性/%	特异性/%
PCT	0.972（0.888~1.000）	<0.001	1.660 ng/L	87.50	97.73
hs-CRP	0.879（0.678~1.000）	<0.001	14.46 mg/L	87.50	95.45
外周血WBC计数	0.902（0.763~1.000）	<0.001	9.34×10⁹	87.50	93.18
NEUT%	0.908（0.751~1.000）	<0.001	75.85%	87.50	95.45
NKG2C^-GZMB⁺ NK细胞百分比	0.884（0.692~1.000）	<0.001	7.98%	87.50	95.40
NKG2C⁺GZMB⁺ NK细胞百分比	0.861（0.693~1.000）	0.001	2.86%	75.00	95.45
NKG2C⁺GZMB^- NK细胞百分比	0.989（0.964~1.000）	<0.001	5.51%	100.00	97.73

[1]	吴苏君, 冀恒涛, 彭梦乐. IL-18、IL-37、NLRP3及NK/DC比值在乙型肝炎相关肝硬化中的临床价值[J]. 检验医学, 2022, 37(6): 518-523.
[2]	荣婷婷, 王维维, 王娟娟, 章黎华, 沈立松. EB病毒感染患儿淋巴细胞亚群特征和EBV DNA载量分析[J]. 检验医学, 2018, 33(4): 285-289.
[3]	梁艳, 王皓, 仲人前. T淋巴细胞和NK细胞在慢性乙型肝炎病毒感染中的作用[J]. 检验医学, 2014, 29(1): 4-9.
[4]	张国英，黄子慧，徐卫平，王丹霞. 组织细胞坏死性淋巴结炎患者外周血T淋巴细胞亚群和NK细胞检测及临床意义[J]. 检验医学, 2013, 28(2): 128-130.
[5]	余玲玲;王慧燕;杨锦红;杨海蔚. 从脑脊液中分离出埃森沙门菌一例[J]. 检验医学, 2010, 25(02): 154-155.
[6]	沈亚娟;张建;田志刚. 肿瘤患者自然杀伤细胞受体NKG2A和NKG2D的表达[J]. 检验医学, 2008, 23(04): 384-387.
[7]	王霞莉;王纪敏;谭晓玉. 充血性心力衰竭患者自然杀伤细胞活性的变化[J]. 检验医学, 2008, 23(04): 394-396.
[8]	王洛平;程显芬;徐光芝;郝轶梅;王静霞;王会萍. 小儿化脓性脑膜炎脑脊液酶学检测结果评价[J]. 检验医学, 2001, 16(03): 170-171.
[9]	高英玉；高东田；李莉. 玫瑰色微球菌引起化脓性脑膜炎一例[J]. 检验医学, 1999, 14(6): 367-367.
[10]	伍志臻；陈福国；陈秀琴. NK和LAK细胞活性测定在抑郁性神经症中的应用[J]. 检验医学, 1999, 14(4): 219-220.
[11]	高东田；高素平；李晓哲. 醋酸钙不动杆菌引起化脓性脑膜炎一例[J]. 检验医学, 1999, 14(1): 19-19.
[12]	高东田；高素平；李晓哲. 醋酸钙不动杆菌引起化脓性脑膜炎一例[J]. 检验医学, 1999, 14(1): 19-19.
[13]	张纪云；高菊兴. 脑脊液中铜蓝蛋白检测的意义[J]. 检验医学, 1997, 12(2): 93-93.
[14]	史文俊；张素萍；卫彩绒. 混合性真菌感染引起化脓性脑膜炎一例[J]. 检验医学, 1996, 11(4): 252-252.
[15]	郭玉伟；隋秀丽；赵爱娜；王鹏；林丽萍. 可溶性白细胞介素2受体测定在急性白血病患者中的应用[J]. 检验医学, 1996, 11(2): 99-99.