免疫磁珠法阴性富集循环肿瘤细胞方法的建立

doi:10.3969/j.issn.1673-8640.2018.08.023

检验医学 ›› 2018, Vol. 33 ›› Issue (8): 770-771.DOI: 10.3969/j.issn.1673-8640.2018.08.023

免疫磁珠法阴性富集循环肿瘤细胞方法的建立

张磊, 黄慧玲, 杨昂, 杨昂, 郑春红, 朱玉华, 刘松麟, 李印淑

亚能生物实验室，广东深圳 518102

收稿日期:2017-08-30 出版日期:2018-08-30 发布日期:2018-09-07
作者简介:null
作者简介：张磊,男,1981年生,博士,医师,主要从事肿瘤液体活检及伴随诊断研究。
基金资助:
深圳市孔雀技术创新项目（KQCX2015033016451178）;深圳市战略性新兴产业和未来产业发展专项（深发改[2016]887号）

123456

Received:2017-08-30 Online:2018-08-30 Published:2018-09-07

摘要/Abstract

摘要： 循环肿瘤细胞（circulating tumor cell，CTC）检测对于肿瘤的早期发现、临床诊断、病情监测等具有重要意义，但CTC在肿瘤患者外周血中极为稀少，约为1～10个/mL，而正常成人外周血中血细胞数量为109个/mL，白细胞的数量是（4～10）×106个/mL[1-2]。CTC远低于血液中其他类型的细胞，数量的稀少使得血液CTC检测极具挑战性，加上CTC产生的复杂性、异质性，更增加了其检测的难度[3-4]。因此，如何从数量庞大的背景血液细胞中准确地富集出几个CTC，是CTC检测技术需要解决的关键问题。本研究利用免疫磁珠和免疫荧光技术，建立一种高效、不依赖肿瘤细胞表面标志物、不依赖于肿瘤细胞大小的CTC阴性富集方法和免疫荧光鉴定方法。

中图分类号:

R446.61

张磊, 黄慧玲, 杨昂, 杨昂, 郑春红, 朱玉华, 刘松麟, 李印淑. 免疫磁珠法阴性富集循环肿瘤细胞方法的建立[J]. 检验医学, 2018, 33(8): 770-771.

CTC掺入数量（个/3 mL）	第1次（个）	第2次（个）	第3次（个）	第4次（个）	第5次（个）	第6次（个）	平均回收数（个）	平均回收率（%）	标准差（%）
6	4	3	6	3	3	2	3.50	58.33	22.97
9	8	8	10	5	9	6	7.67	85.19	20.69
15	15	14	12	8	13	15	12.83	85.56	17.60
30	28	25	21	26	29	28	26.17	87.22	9.76
90	39	65	68	58	72	70	62.00	68.89	13.64
300	206	217	231	223	234	239	225.00	75.00	4.06

CTC掺入数量（个/3 mL）	第1次（个）	第2次（个）	第3次（个）	第4次（个）	第5次（个）	第6次（个）	平均回收数（个）	平均回收率（%）	标准差（%）
6	4	3	6	3	3	2	3.50	58.33	22.97
9	8	8	10	5	9	6	7.67	85.19	20.69
15	15	14	12	8	13	15	12.83	85.56	17.60
30	28	25	21	26	29	28	26.17	87.22	9.76
90	39	65	68	58	72	70	62.00	68.89	13.64
300	206	217	231	223	234	239	225.00	75.00	4.06

组别	CTC掺入数量
组别	6	9	15	30	90	300
免疫荧光鉴定前	58.33	85.19	85.56	87.22	68.89	75.00
免疫荧光鉴定后	62.50	88.90	93.30	95.00	81.50	77.10

组别	CTC掺入数量
组别	6	9	15	30	90	300
免疫荧光鉴定前	58.33	85.19	85.56	87.22	68.89	75.00
免疫荧光鉴定后	62.50	88.90	93.30	95.00	81.50	77.10

[1]	PANTEL K,SPEICHER M R.The biology of circulating tumor cells[J]. Oncogene,2016,35(10):1216-1224.
[2]	JOOSSE S A,PANTEL K.Biologic challenges in the detection of circulating tumor cells[J]. Cancer Res,2013,73(1):8-11.
[3]	ACETO N,BARDIA A,MIYAMOTO D T,et al.Circulating tumor cell clusters are oligoclonal precursors of breast cancer metastasis[J]. Cell,2014,158(5):1110-1122.
[4]	王惠宇,葛蓉,刘宝瑞. 肿瘤内部异质性和“实时液体活检”研究进展[J]. 现代肿瘤医学,2015,23(7):1008-1011.
[5]	KULASINGHE A,KENNY L,PERRY C,et al.Impact of label-free technologies in head and neck cancer circulating tumour cells[J]. Oncotarget,2016,7(44):71223-71234.

免疫磁珠法阴性富集循环肿瘤细胞方法的建立

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[1]	周韵斓, 沈立松. 液体活检标志物在非小细胞肺癌中的临床应用和挑战[J]. 检验医学, 2023, 38(9): 807-811.
[2]	高锋. 新型肿瘤标志物的临床应用——前景与挑战[J]. 检验医学, 2023, 38(4): 303-306.
[3]	吴炯, 胡嘉华, 施美芳, 刘涛, 戴洁, 卢忻怡, 邹政. 前列腺癌生物标志物研究进展[J]. 检验医学, 2023, 38(2): 190-195.
[4]	项瑾, 刘爱平, 胡尧, 吴之源, 曹国君, 关明. 新型冠状病毒肺炎患者抗核抗体谱分析和血清加热灭活对检测的影响[J]. 检验医学, 2023, 38(12): 1141-1146.
[5]	王丽, 陈琳, 黄卓春. 易误判的ANA荧光模型1例报道[J]. 检验医学, 2023, 38(12): 1157-1159.
[6]	柳行强, 宁立芬, 李琳, 陈忠成. FR⁺-CTC、ANXA2、ProGRP与肺癌临床病理特征的相关性[J]. 检验医学, 2022, 37(8): 735-740.
[7]	俞琦, 孙懿, 王琼丽, 蔡逸婷, 李莉. 外周血循环肿瘤细胞形态学分析技术在临床检验中的应用[J]. 检验医学, 2022, 37(3): 264-269.
[8]	沈素雅, 黄建钊, 李小怀. 循环肿瘤细胞富集技术研究进展[J]. 检验医学, 2022, 37(1): 91-96.
[9]	杨朝美, 冯杰, 郎磊, 颜光涛. CTC、CEA、CA125联合检测在结直肠癌中的临床价值[J]. 检验医学, 2021, 36(9): 901-905.
[10]	苏玉萍, 林建成, 吴海明, 徐锦. 14 741例儿童7种常见呼吸道病毒检测结果分析[J]. 检验医学, 2020, 35(12): 1259-1262.
[11]	张程, 杨莹, 吴珊珊, 吕丹, 张婷婷. 液流芯片法在诊断抗中性粒细胞胞浆抗体相关性血管炎中的价值[J]. 检验医学, 2019, 34(7): 633-636.
[12]	肖潇, 高春芳. 循环肿瘤细胞在原发性肝癌中的研究应用进展[J]. 检验医学, 2019, 34(7): 661-666.
[13]	曹旻璐, 沈敏娜, 周琰, 王蓓丽, 张春燕, 潘柏申, 郭玮. qRT-PCR平台和CellSearch系统检测肝细胞肝癌患者循环肿瘤细胞性能比较[J]. 检验医学, 2019, 34(10): 927-931.
[14]	奚卫, 张颐豪, 赵荣平, 魏清. 3种检测方法在儿童肺炎支原体感染诊断中的应用[J]. 检验医学, 2019, 34(10): 941-943.
[15]	赵凌旭, 赵婕, 胡晓波. 微阵列ELFA和IBT 2种过敏原筛查方法临床应用评价[J]. 检验医学, 2017, 32(9): 806-808.