微生物多重核酸检测技术研究进展

doi:10.3969/j.issn.1673-8640.2026.04.014

摘要/Abstract

摘要：

核酸检测技术因其快速、灵敏、特异、精确等优点，已广泛应用于细菌、真菌和寄生虫等的检测，并在感染性疾病的早期筛查和确诊等方面发挥着重要作用。针对病原微生物核酸的多重检测技术具有快速、高通量和样本消耗少的特点，可在同一反应中同时检测多个靶标微生物，能够分辨混合感染，覆盖微生物谱广。文章基于聚合酶链反应（PCR）、环介导等温扩增技术（LAMP）这2个多重核酸检测技术的重要分支及其在微生物检测和感染性疾病诊断中的应用进行综述。

关键词: 微生物, 核酸扩增技术, 多重检测, 特异性

Abstract:

Nucleic acid determination technology，due to its advantages such as rapidity，sensitivity，specificity and accuracy，has been widely applied in the determination of bacteria，fungi and parasites，and plays a role in the early screening and diagnosis of infectious diseases. The microbial multiplex nucleic acid determination technology has the characteristics of rapidity，high throughput and low sample consumption，allowing for the simultaneous determination of multiple target microorganisms in the same reaction，enabling the differentiation of mixed infections，and covering a wide range of microbial spectra. This review focuses on the multiplex nucleic acid determination technology based on polymerase chain reaction（PCR） and loop-mediated isothermal amplification（LAMP），as well as its application progress in microbial determination and diagnosis of infectious diseases.

Key words: Microorganism, Nucleic acid amplification technology, Multiplex determination, Specificity

中图分类号:

R446.5

林永钦, 林燕婷, 王冬梅. 微生物多重核酸检测技术研究进展[J]. 检验医学, 2026, 41(4): 398-404.

LIN Yongqin, LIN Yanting, WANG Dongmei. Research progress on microbial multiplex nucleic acid determination technology[J]. Laboratory Medicine, 2026, 41(4): 398-404.

图/表 2

参考文献 44

[1]	黄斐, 郭玮. 呼吸道病毒快速检测的临床应用现状与挑战[J]. 中国临床医学, 2024, 31(5):826-831.
[2]	中华检验医学培训工程专家委员会, 中华医学会呼吸病学分会. 成人呼吸道感染病原诊断核酸检测技术临床应用专家共识(2023)[J]. 协和医学杂志, 2023, 14(5):959-971.
[3]	ARUNRUT N, KIATPATHOMCHAI W, ANANCHAIPATTANA C. Multiplex PCR assay and lyophilization for detection of Salmonella spp.,Staphylococcus aureus and Bacillus cereus in pork products[J]. Food Sci Biotechnol, 2018, 27(3):867-875.
[4]	DING Q, SHI M, JI P, et al. Genetic diversity and differentiation of cultured Macrobrachium rosenbergii in China using newly developed microsatellite multiplex PCR panels[J]. Aquaculture International, 2024, 32:7895-7910.
[5]	SCHWARZ A P, MALYGINA D A, KOVALENKO A A, et al. Multiplex qPCR assay for assessment of reference gene expression stability in rat tissues/samples[J]. Mol Cell Probes, 2020, 53:101611.
[6]	CAO L, LV W, LI A, et al. A SYBR green I-based multiplex real-time PCR for simultaneous detection of pseudorabies virus,porcine circovirus 3 and porcine parvovirus[J]. BMC Vet Res, 2025, 21(1):10.
[7]	冯育芳, 王莎莎, 邢进, 等. 实验树鼩空肠弯曲菌、沙门氏菌和志贺菌多重荧光定量PCR方法的建立[J]. 中国比较医学杂志, 2017, 27(6):56-62.
[8]	邱亚群, 扈庆华, 石晓路, 等. 改良分子信标-实时PCR快速检测4种食源性致病菌[J]. 实用预防医学, 2015, 22(8):905-908.
[9]	IKEUCHI S, BUI H T, SASSA-O'BRIEN Y,et al. Development of detection methods by multiplex real-time PCR for highly pathogenic Yersinia enterocolitica,low pathogenic Yersinia enterocolitica,and Yersinia pseudotuberculosis based on SYBR green and TaqMan probes[J]. J Microbiol Methods, 2023, 211:106779.
[10]	HU Q, LYU D, SHI X, et al. A modified molecular beacons-based multiplex real-time PCR assay for simultaneous detection of eight foodborne pathogens in a single reaction and its application[J]. Foodborne Pathog Dis, 2014, 11(3):207-214.
[11]	TSCHRITTER C M, V C DE GROOT P, BRANIGAN M, et al. A new multiplexed magnetic capture-droplet digital PCR tool for monitoring wildlife population health and pathogen surveillance[J]. Ecol Evol, 2023, 13(11):e10655.
[12]	程深伟, 张克强, 梁军锋, 等. 畜禽养殖粪污中典型致病菌的三重微滴式数字PCR定量检测方法的建立[J]. 生物技术通报, 2022, 38(9):271-280.
[13]	杜奕溥. 基于微滴数字PCR技术的五种生物威胁病原体多重定量检测方法的建立与评价[D]. 北京: 中国人民解放军军事科学院, 2022.
[14]	LEWIN A S, HAUGEN T, NETZER R, et al. Multiplex droplet digital PCR assay for detection of Flavobacterium psychrophilum and Yersinia ruckeri in Norwegian aquaculture[J]. J Microbiol Methods, 2020, 177:106044.
[15]	XU Y G, LIU Z M, ZHANG B Q, et al. Development of a novel target-enriched multiplex PCR(Tem-PCR)assay for simultaneous detection of five foodborne pathogens[J]. Food Control, 2016, 64:54-59.
[16]	ZHANG Z, YAO J, HUANG X, et al. Multiplex real-time PCR using double-strand primers and probes for the detection of nucleic acids[J]. Anal Methods, 2020, 12(44):5392-5396.
[17]	LI Y, HUANG K, YIN J, et al. Clinical evaluation of a multiplex droplet digital PCR for pathogen detection in critically ill COVID-19 patients with bloodstream infections[J]. Infection, 2023, 52(3):1027-1039.
[18]	HU X, LIN C, LI G, et al. A microfluidic chip-based multiplex PCR-reverse dot blot hybridization technique for rapid detection of enteropathogenic bacteria[J]. J Microbiol Methods, 2023, 211:106785.
[19]	LAPA S A, KLOCHIKHINA E S, MIFTAKHOV R A, et al. Multiplex on-chip PCR with direct detection of immobilized primer elongation[J]. Bioorg Chem, 2021, 47:1122-1125.
[20]	SHANG Y, XU W, WANG Y, et al. Novel multiplex qualitative detection using universal primer-multiplex-PCR combined with pyrosequencing[J]. Food Chem, 2017, 237:773-778.
[21]	JIN M, DING J, ZHOU Y, et al. StratoLAMP:label-free,multiplex digital loop-mediated isothermal amplification based on visual stratification of precipitate[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2024, 121(2):e2314030121.
[22]	GARG N, AHMAD F J, KAR S. Recent advances in loop-mediated isothermal amplification(LAMP)for rapid and efficient detection of pathogens[J]. Curr Res Microb Sci, 2022, 3:100120.
[23]	陈兵, 孙洁, 陈书琨, 等. 三种家禽病毒多重RT-LAMP检测方法的建立与应用[J]. 上海畜牧兽医通讯, 2016(1):2-5.
[24]	FAN Q, XIE Z, ZHANG Y, et al. A multiplex fluorescence-based loop-mediated isothermal amplification assay for identifying chicken parvovirus,chicken infectious anaemia virus,and fowl aviadenovirus serotype 4[J]. Avian Pathol, 2023, 52(2):128-136.
[25]	范晴, 谢芝勋, 谢志勤, 等. 二重荧光RT-LAMP方法鉴别检测口蹄疫病毒和水泡性口炎病毒[J]. 畜牧兽医学报, 2018, 49(5):996-1004.
[26]	何力力. 猫杯状病毒、细小病毒、疱疹病毒Ⅰ型核酸免提取三重荧光RT-LAMP检测方法的建立及试剂盒研制[D]. 南京: 南京农业大学, 2021.
[27]	刘宁伟. 三种食源性致病菌多重环介导恒温扩增检测技术研究[D]. 北京: 中国人民解放军军事科学院, 2017.
[28]	田浩, 李光耀, 史笑娜. 多重荧光LAMP法在食源性致病菌风险监测中的应用[J]. 食品工程, 2017(3):23-27.
[29]	JUNG J H, OH S J, KIM Y T, et al. Combination of multiplex reverse-transcription loop-mediated isothermal amplification with an immunochromatographic strip for subtyping influenza A virus[J]. Anal Chim Acta, 2015, 853:541-547.
[30]	PASOOKHUSH P, LONGYANT S, SITHIGORNGUL P, et al. Development of duplex loop-mediated isothermal amplification(dLAMP) combined with lateral flow dipstick(LFD) for the rapid and specific detection of Vibrio vulnificus and V. parahaemolyticus[J]. N Am J Aquac, 2016, 78(4):327-336.
[31]	BUDDHACHAT K, RITBAMRUNG O, INTHIMA P, et al. Rapid detection of two pathogenically important Xanthomonas in rice using a loop-mediated isothermal amplification with lateral flow dipstick(LAMP-LFD)[J]. Crop Protection, 2024, 175:106466.
[32]	WU X, SONG Z, ZHAI X, et al. Simultaneous and visual detection of infectious bronchitis virus and Newcastle disease virus by multiple LAMP and lateral flow dipstick[J]. Poult Sci, 2019, 98(11):5401-5411.
[33]	HONG Y, MA B, LI J, et al. Triplex-loop-mediated isothermal amplification combined with a lateral flow immunoassay for the simultaneous detection of three pathogens of porcine viral diarrhea syndrome in swine[J]. Animals(Basel), 2023, 13(12):1910.
[34]	MAHAS A, HASSAN N, AMAN R, et al. LAMP-coupled CRISPR-Cas12a module for rapid and sensitive detection of plant DNA viruses[J]. Viruses, 2021, 13(3):466.
[35]	ZHU Z, LI R, ZHANG H, et al. PAM-free loop-mediated isothermal amplification coupled with CRISPR/Cas12a cleavage(Cas-PfLAMP)for rapid detection of rice pathogens[J]. Biosens Bioelectron, 2022, 204:114076.
[36]	KUMAR S, SHARMA S, KUMARI S, et al. Magnetic multiplex loop mediated isothermal amplification(MM-LAMP)technique for simultaneous detection of dengue and chikungunya virus[J]. J Virol Methods, 2022, 300:114407.
[37]	KIM S, KIM J H, KIM S, et al. Loop-mediated isothermal amplification-based nucleic acid lateral flow assay for the specific and multiplex detection of genetic markers[J]. Anal Chim Acta, 2022, 1205:339781.
[38]	HIGGINS O, CLANCY E, CORMICAN M, et al. Evaluation of an internally controlled multiplex tth endonuclease cleavage loop-mediated isothermal amplification(TEC-LAMP)assay for the detection of bacterial meningitis pathogens[J]. Int J Mol Sci, 2018, 19(2):524.
[39]	ZERILLI F, BONANNO C, SHEHI E, et al. Methylation-specific loop-mediated isothermal amplification for detecting hypermethylated DNA in simplex and multiplex formats[J]. Clinical chemistry, 2010, 56(8):1287-1296.
[40]	KUBOTA R, JENKINS D M. Real-time duplex applications of loop-mediated amplification(LAMP)by assimilating probes[J]. Int J Mol Sci, 2015, 16(3):4786-4799.
[41]	JANG W S, LIM D H, CHOE Y, et al. Development of a multiplex loop-mediated isothermal amplification assay for diagnosis of Plasmodium spp.,Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax[J]. Diagnostics(Basel), 2021, 11(11):1950.
[42]	PRIYE A, BIRD S W, LIGHT Y K, et al. A smartphone-based diagnostic platform for rapid detection of Zika,chikungunya,and dengue viruses[J]. Sci Rep, 2017, 7:44778.
[43]	LEE J E, MUN H, HYOYOUNG M, et al. A rapid and colorimetric loop-mediated isothermal amplification(LAMP)based on HRP-mimicking molecular beacon for the detection of major 6 Listeria species in enoki mushroom[J]. Food Control, 2022, 2022:133108569.
[44]	NAK-ON S, TEJANGKURA T, CHONTANANARTH T. Multi-detection for paramphistomes using novel manually designed PAR-LAMP primers and its application in a lateral flow dipstick(LAMP-LFD)system[J]. Vet Parasitol, 2023, 317:109905.

参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样本基质
[6]	猪细小病毒	实时PCR	NS1	3.67 拷贝·μL^-1	猪
	伪狂犬病病毒		gE	4.76 拷贝·μL^-1
	猪圆环病毒3型		Cap	3.07 拷贝·μL^-1
[7]	空肠弯曲菌	实时PCR	HipO区域	1×10³ ng·μL^-1	树鼩
	沙门菌属		inV区域
	志贺菌属		ipaH区域
[8]	肠道沙门菌肠道亚种	实时PCR	侵袭性基因ssaR	DNA检出限1~100 fg·反应^-1	食品污染物
	金黄色葡萄球菌		菌肠毒素基因nuc	细菌纯培养物检出限
	单核细胞增生李斯特菌		hlyA	1~6.25 CFU·反应^-1
	大肠埃希菌O157：H7		rfbE
[9]	高致病性小肠结肠炎耶尔森菌	实时PCR	Ail	10¹ CFU·反应^-1	兔/野生啮齿动物粪便
	低致病性小肠结肠炎耶尔森菌		fyuA
	假结核耶尔森菌		inv
[10]	沙门菌属	实时PCR	ssaR	细菌培养物（1.2~4.0）×10² CFU·g^-1 加标粪便样品（1.3~16.0）×10³ CFU·g^-1	食品样本
	单核细胞增生李斯特氏菌		hlyA
	大肠埃希菌O157		rfbE
	副溶血性弧菌		toxR
	创伤弧菌		vvh
	空肠弯曲菌		gyrA
	阪崎肠杆菌		16S rRNA
	志贺菌属		ipaH
参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样品基质
[11]	红斑丹毒丝菌	ddPCR	非编码区	0.18拷贝·μL^-1	北极熊
	土拉弗朗西斯菌		t4脂蛋白基因	0.09拷贝·μL^-1
	结核分枝杆菌结核菌复合群		mpb70	0.07拷贝·μL^-1
	弓形虫		DNA重复元件	0.07拷贝·μL^-1
	旋毛虫属		线粒体rrnS基因	0.06拷贝·μL^-1
[12]	金黄色葡萄球菌	ddPCR	Nuc	0.79拷贝·μL^-1	畜禽养殖场粪便
	大肠埃希菌O157：H7		rfbE	1.02拷贝·μL^-1
	肠炎沙门菌		invA	0.68拷贝·μL^-1
[13]	鼠疫耶尔森菌	ddPCR	3a	0.1 pg·μL^-1	土壤
	类鼻疽伯克霍尔德菌		DP58_RS29725a	0.1 pg·μL9
	炭疽芽孢杆菌		gs	1 pg·μL^-1
	布鲁氏菌		bp26	0.1 pg·μL^-1
	土拉弗朗西斯菌		AKR	0.1 pg·μL^-1
[14]	嗜冷黄杆菌	ddPCR	dnaN	0.055 ng	鲑鱼
	鲁氏耶尔森菌		yruR-I	6.3 ng
[15]	金黄色葡萄球菌	靶序列富集多重PCR	femA	200 CFU·mL^-1/200 CFU·g^-1	食品样本
	志贺菌属		ipaH
	沙门菌属		invA
	单核细胞增生李斯特菌		hly
	大肠埃希菌0157：H7		rfbE

参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样本基质
[6]	猪细小病毒	实时PCR	NS1	3.67 拷贝·μL^-1	猪
	伪狂犬病病毒		gE	4.76 拷贝·μL^-1
	猪圆环病毒3型		Cap	3.07 拷贝·μL^-1
[7]	空肠弯曲菌	实时PCR	HipO区域	1×10³ ng·μL^-1	树鼩
	沙门菌属		inV区域
	志贺菌属		ipaH区域
[8]	肠道沙门菌肠道亚种	实时PCR	侵袭性基因ssaR	DNA检出限1~100 fg·反应^-1	食品污染物
	金黄色葡萄球菌		菌肠毒素基因nuc	细菌纯培养物检出限
	单核细胞增生李斯特菌		hlyA	1~6.25 CFU·反应^-1
	大肠埃希菌O157：H7		rfbE
[9]	高致病性小肠结肠炎耶尔森菌	实时PCR	Ail	10¹ CFU·反应^-1	兔/野生啮齿动物粪便
	低致病性小肠结肠炎耶尔森菌		fyuA
	假结核耶尔森菌		inv
[10]	沙门菌属	实时PCR	ssaR	细菌培养物（1.2~4.0）×10² CFU·g^-1 加标粪便样品（1.3~16.0）×10³ CFU·g^-1	食品样本
	单核细胞增生李斯特氏菌		hlyA
	大肠埃希菌O157		rfbE
	副溶血性弧菌		toxR
	创伤弧菌		vvh
	空肠弯曲菌		gyrA
	阪崎肠杆菌		16S rRNA
	志贺菌属		ipaH
参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样品基质
[11]	红斑丹毒丝菌	ddPCR	非编码区	0.18拷贝·μL^-1	北极熊
	土拉弗朗西斯菌		t4脂蛋白基因	0.09拷贝·μL^-1
	结核分枝杆菌结核菌复合群		mpb70	0.07拷贝·μL^-1
	弓形虫		DNA重复元件	0.07拷贝·μL^-1
	旋毛虫属		线粒体rrnS基因	0.06拷贝·μL^-1
[12]	金黄色葡萄球菌	ddPCR	Nuc	0.79拷贝·μL^-1	畜禽养殖场粪便
	大肠埃希菌O157：H7		rfbE	1.02拷贝·μL^-1
	肠炎沙门菌		invA	0.68拷贝·μL^-1
[13]	鼠疫耶尔森菌	ddPCR	3a	0.1 pg·μL^-1	土壤
	类鼻疽伯克霍尔德菌		DP58_RS29725a	0.1 pg·μL9
	炭疽芽孢杆菌		gs	1 pg·μL^-1
	布鲁氏菌		bp26	0.1 pg·μL^-1
	土拉弗朗西斯菌		AKR	0.1 pg·μL^-1
[14]	嗜冷黄杆菌	ddPCR	dnaN	0.055 ng	鲑鱼
	鲁氏耶尔森菌		yruR-I	6.3 ng
[15]	金黄色葡萄球菌	靶序列富集多重PCR	femA	200 CFU·mL^-1/200 CFU·g^-1	食品样本
	志贺菌属		ipaH
	沙门菌属		invA
	单核细胞增生李斯特菌		hly
	大肠埃希菌0157：H7		rfbE

参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样本基质
[23]	禽流感病毒	实时荧光LAMP	M	10 拷贝·反应^-1	鸡
	新城疫病毒		F
	传染性法氏囊病毒		VP1
[24]	鸡细小病毒	实时荧光LAMP	NS	307 拷贝·μL^-1	鸡
	鸡传染性贫血病毒		VP1	749 拷贝·μL^-1
	禽腺病毒4型		hexon	648 拷贝·μL^-1
[25]	口蹄疫病毒	实时荧光LAMP	3D	100混合模板拷贝·反应^-1	牛
	水疱性口炎病毒		N	100混合模板拷贝·反应^-1
[26]	猫杯状病毒	实时荧光LAMP	ORF2	45.7 fg·μL^-1	猫
	猫细小病毒		VP2	5.57 fg·μL^-1
	猫疱疹病毒Ⅰ型		NK	3.72 fg·μL^-1
[27]	沙门菌属	实时荧光LAMP	bcfD	10 pg·μL^-1
	副溶血性弧菌		toxR
参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样品基质
[28]	沙门菌属	实时荧光LAMP	invA	71 CFU·mL^-1	肉制品/豆制品
	金黄色葡萄球菌		femA
[29]	甲型流感病毒H1N1	LAMP-LFD	H1	10 拷贝·反应^-1	甲型流感病毒患者
	甲型流感病毒H3N2		H3
	甲型流感病毒H5N1		H5
[30]	创伤弧菌	LAMP-LFD	rpoS	41 CFU·反应^-1	虾
	副溶血弧菌		tlh	4.1 CFU·反应^-1
[31]	水稻白叶枯病菌	LAMP-LFD	Xoo80	2.5 × 10⁴ CFU·mL^-1	水稻
	水稻细菌性条斑病菌		Xoc3863	2.5 × 10⁵ CFU·mL^-1
[32]	传染性支气管炎病毒	LAMP-LFD	5'-UTR区	100.8 拷贝·反应^-1	鸡
	新城疫病毒		LP	100.7 拷贝·反应^-1
[33]	猪流行性腹泻病毒	CRSPR-Cas- LAMP	gp6	2.40×10¹拷贝·μL^-1	猪粪便
	猪博卡病毒		vp6	2.52×10¹拷贝·μL^-1
	猪轮状病毒		vp1	2.89×10¹拷贝·μL^-1
[34]	番茄黄化曲叶病毒	CRSPR-Cas- LAMP	外壳蛋白	100 aM	番茄植株
[35]	番茄卷叶新德里病毒	CRSPR-Cas- LAMP	PilV	9 拷贝·μL^-1	水稻
	水稻白叶枯病菌		RNA4	3 拷贝·μL^-1
	水稻条纹病毒		RNA4	3 拷贝·μL^-1
	水稻黑条矮缩病毒		P1
[36]	登革病毒	多重微流控LAMP		51.65 ng·μL^-1
	基孔肯雅病毒
[37]	沙门菌属	LAMP核酸侧向曾析试纸条法	Stn	5.44 拷贝·μL^-1	LB 培养基/饮用水/蛋壳
	金黄色葡萄球菌	LAMP核酸侧向曾析试纸条法	femA		LB 培养基/饮用水/蛋壳
[38]	肺炎链球菌	Tth核酸内切酶切割-LAMP		39.5 拷贝	患者样本
	脑膜炎奈瑟菌			17.3 拷贝
	流感嗜血杆菌			25.9 拷贝

参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样本基质
[23]	禽流感病毒	实时荧光LAMP	M	10 拷贝·反应^-1	鸡
	新城疫病毒		F
	传染性法氏囊病毒		VP1
[24]	鸡细小病毒	实时荧光LAMP	NS	307 拷贝·μL^-1	鸡
	鸡传染性贫血病毒		VP1	749 拷贝·μL^-1
	禽腺病毒4型		hexon	648 拷贝·μL^-1
[25]	口蹄疫病毒	实时荧光LAMP	3D	100混合模板拷贝·反应^-1	牛
	水疱性口炎病毒		N	100混合模板拷贝·反应^-1
[26]	猫杯状病毒	实时荧光LAMP	ORF2	45.7 fg·μL^-1	猫
	猫细小病毒		VP2	5.57 fg·μL^-1
	猫疱疹病毒Ⅰ型		NK	3.72 fg·μL^-1
[27]	沙门菌属	实时荧光LAMP	bcfD	10 pg·μL^-1
	副溶血性弧菌		toxR
参考文献	病原体	扩增方法	靶基因	检出限	样品基质
[28]	沙门菌属	实时荧光LAMP	invA	71 CFU·mL^-1	肉制品/豆制品
	金黄色葡萄球菌		femA
[29]	甲型流感病毒H1N1	LAMP-LFD	H1	10 拷贝·反应^-1	甲型流感病毒患者
	甲型流感病毒H3N2		H3
	甲型流感病毒H5N1		H5
[30]	创伤弧菌	LAMP-LFD	rpoS	41 CFU·反应^-1	虾
	副溶血弧菌		tlh	4.1 CFU·反应^-1
[31]	水稻白叶枯病菌	LAMP-LFD	Xoo80	2.5 × 10⁴ CFU·mL^-1	水稻
	水稻细菌性条斑病菌		Xoc3863	2.5 × 10⁵ CFU·mL^-1
[32]	传染性支气管炎病毒	LAMP-LFD	5'-UTR区	100.8 拷贝·反应^-1	鸡
	新城疫病毒		LP	100.7 拷贝·反应^-1
[33]	猪流行性腹泻病毒	CRSPR-Cas- LAMP	gp6	2.40×10¹拷贝·μL^-1	猪粪便
	猪博卡病毒		vp6	2.52×10¹拷贝·μL^-1
	猪轮状病毒		vp1	2.89×10¹拷贝·μL^-1
[34]	番茄黄化曲叶病毒	CRSPR-Cas- LAMP	外壳蛋白	100 aM	番茄植株
[35]	番茄卷叶新德里病毒	CRSPR-Cas- LAMP	PilV	9 拷贝·μL^-1	水稻
	水稻白叶枯病菌		RNA4	3 拷贝·μL^-1
	水稻条纹病毒		RNA4	3 拷贝·μL^-1
	水稻黑条矮缩病毒		P1
[36]	登革病毒	多重微流控LAMP		51.65 ng·μL^-1
	基孔肯雅病毒
[37]	沙门菌属	LAMP核酸侧向曾析试纸条法	Stn	5.44 拷贝·μL^-1	LB 培养基/饮用水/蛋壳
	金黄色葡萄球菌	LAMP核酸侧向曾析试纸条法	femA		LB 培养基/饮用水/蛋壳
[38]	肺炎链球菌	Tth核酸内切酶切割-LAMP		39.5 拷贝	患者样本
	脑膜炎奈瑟菌			17.3 拷贝
	流感嗜血杆菌			25.9 拷贝