作者简介:许耘川,男,1984年生,学士,主要从事临床检验工作。
通讯作者:沈立松,联系电话:021-65790000-5100。
甲氨蝶呤(methotrexate , MTX)为叶酸类抗肿瘤药, 通过竞争性抑制二氢叶酸还原酶阻止四氢叶酸合成, 从而抑制肿瘤细胞增殖。临床上广泛用于治疗儿童淋巴细胞白血病、淋巴瘤、绒毛膜上皮癌和骨肉瘤等恶性肿瘤。但大剂量时对非增殖细胞尤其是骨髓细胞、肝细胞具有毒性作用, 且MTX在体内代谢存在明显个体差异, 因此需要对该药进行血药浓度监测。目前测定MTX血药浓度的常用方法是荧光偏振法(FPIA), 具有快速、易操作及样本无需前处理的特点, 但是其专用试剂盒价格昂贵且抗原抗体可能存在交叉反应[1]。而高效液相色谱(HPLC)法的专一性强, 可将药物本身与其代谢产物分离。本研究建立测定血清MTX浓度的HPLC法, 并与FPIA进行比较, 以探讨临床实验室开展HPLC法检测MTX血药浓度的可行性。
选取62例上海交通大学医学院附属新华医院血液科经MTX化疗后44 h采集的血液样本。
岛津(Shimadzu)全自动HPLC仪, 包括SPD-M20A二极管阵列检测器、SIL-20AC自动进样器、LC-20AD溶液传输单元、CTO-20AC色谱柱柱温箱和CBM-20A系统控制器。TDx血药浓度测定仪及MTX试剂盒均来自美国雅培公司。MTX标准品(Sigma-Aldrich公司); 乙腈(HPLC级); 冰醋酸(分析纯); 高氯酸(分析纯); 超纯水(Milli-Q纯水机制备)。
1.色谱条件 色谱柱为PLATISILTM C18柱(Dikma公司), 5 μ m, 250 mm× 4.6 mm; 流动相为乙腈∶ 3%冰醋酸=10∶ 90(V∶ V); 流速为1 mL/min; 进样量50 μ L; 柱温40 ℃; 紫外检测波长为306 nm。
2.样本处理方法 取血清样本150 μ L, 加20%高氯酸50 μ L, 漩涡混匀30 s, 14 000 r/min(离心半径9.5 cm)高速离心10 min。吸取上清液50 μ L进样。
3.标准血清及质控血清的制备 精确称量10 mg MTX标准品, 溶解于100 mL 0.1 mol/L Na2CO3溶液中, 制备成100 μ g/mL的MTX储备液。取正常人血清作为空白血清, 准确加入MTX储备液, 漩涡混匀, 得浓度分别为0.049、0.098、0.19、0.39、0.78、1.56、6.25、12.50、25.00 ng/L的标准血清。同法制备0.049、0.098、0.19、0.39、0.78、1.56、3.13、6.25、12.5、25.00 ng/L的质控血清。
血清样本加入样本盘中, 按TDx血药浓度测定仪操作指南进行。依次加入稀释剂、荧光标记物、特异抗体等试剂, 孵育约3 min, 计算机通过标准曲线拟合, 将荧光偏振值换算得到相应的浓度值, 输出结果。
应用SPSS 13.0统计软件进行统计学分析。计量资料以
空白血清图谱在MTX出峰处背景干净, 无明显杂峰干扰; MTX峰形尖锐且分离良好[分离度(resolution, Rs)≥ 1.5]; MTX的保留时间为9.1 min。HPLC法的色谱结果见图1。
取浓度分别为0.049、0.098、0.19、0.39、0.78、1.56、6.25、12.50、25.00 ng/L系列标准血清, 按HPLC法的样本处理方法处理后进样测定。以MTX浓度(X)为横坐标, 峰高(Y)为纵坐标绘制标准曲线。因MTX治疗浓度范围跨度较大, 为减少测定误差, 结合临床检测需要, 将标准曲线作两段处理。回归方程分别为Y1= 6 507.4X-9.4, r=0.999; Y2= 6 993.1X-647.8, r=1。表明本法的MTX检测浓度分别在0.049~0.78和0.78~25 ng/L范围内线性关系良好。
取0.049、3.13、25.00 ng/L的质控血清作为低、中、高3个浓度的样本, 按HPLC法的样本处理方法处理, 各浓度单日内重复测定5次, 计算日内相对标准偏差(RSD)值。另自配制样本之日开始, 每日取上述3个浓度质控血清测定5次, 计算日间RSD值, 结果3个浓度质控血清的日内及日间RSD均< 6%, 见表1。
![]() | 表1 精密度试验结果 |
1.相对回收试验 取浓度分别为0.049、3.13、25.00 ng/L的质控血清各5份, 按HPLC法的样本处理方法处理, 测得峰高并将其代入回归方程, 求出实测浓度, 与其加入浓度的比值即为MTX的相对回收率, 结果见表2。
2.绝对回收试验 配制浓度为0.049、3.13、25.00 ng/L MTX水溶液与同浓度质控血清5份, 按HPLC法的样本处理方法处理, 记录各浓度水溶液和质控血清的MTX峰高。质控血清的MTX的峰高与相同浓度水溶液峰高的比值即为MTX的绝对回收率, 结果见表2。
![]() | 表2 回收率试验 (%) |
按信噪比(S/N)=3测得本法中MTX的最低检测浓度为0.025 ng/L。
62例患者样本HPLC法测定值为(0.172± 0.139)ng/L, FPIA测定值为(0.177± 0.138)ng/L。相关性分析表明2种方法具有良好的相关性(r=0.973, P< 0.01), 见图2。对2种方法结果进行配对样本t检验, 结果表明其差异无统计学意义(P=0.705)。
检测方法的特异性是血药浓度监测方法评价的重要指标, 合并用药以及药物代谢产物是影响方法特异性的主要因素, 其中代谢产物因与原药性质相近故影响最大。研究发现, 7-OH-MTX及2, 4-二氨基-N10-甲基蝶酸(DAMPA)是MTX的主要代谢产物[2], 而在大剂量MTX化疗数小时后, 血液中7-OH-MTX浓度甚至会高于MTX原药[1], 因此最佳的MTX检测方法必需对原药具有高度专一性。目前MTX血药浓度测定方法主要有FPIA、酶倍增免疫测定法(EMIT)、放射免疫法(RIA)等[3], 其中FPIA应用较广。然而FPIA是基于抗原抗体竞争结合的免疫方法, 与MTX的主要代谢产物7-OH-MTX可能存在一定的交叉反应[2], 导致检测结果存在偏差, 而且该方法需要使用仪器配套试剂盒, 费用较高。HPLC法的最大特点是专一性强, 能够有效分离MTX原药及其代谢产物。本研究建立的HPLC法在对62例临床样本检测中, 在目标峰附近未检测出其他杂峰, 所以该测定方法能够基本排除其他药物以及代谢产物的干扰, 准确测定目标物。本研究发现部分样本在MTX峰后2 min左右会出现一代谢峰, 此峰是否为7-OH-MTX还需标准品对其进行定性分析, 而该物质的浓度高低对于FPIA的影响也有待进一步研究。
在HPLC法检测中, 样本的前处理方法至关重要。MTX血样的处理常用液液萃取法和直接沉淀法[4], 其中萃取法操作复杂、耗时, 且需要合适的内标物才能准确定量, 不适合用于实验室常规检测。本研究采用直接沉淀法[5, 6]并加以改良, 其操作简便、快速, 且能获得较高的提取回收率。通过预试验比较乙腈、甲醇、三氯醋酸及高氯酸4种蛋白沉淀试剂, 发现MTX不溶于乙腈、甲醇, 若使用以上2种沉淀剂会大大降低提取回收率, 影响检测限。沈佐君等[7]采用高效毛细管电泳法测定血清MTX浓度, 其最低的检测浓度为0.55 μ mol/L(0.25 ng/L), 该方法采用乙腈作为蛋白沉淀剂, 可能降低了提取回收率, 使得检测限偏高, 只能基本满足临床需要。使用三氯醋酸会产生较多杂峰, 影响结果。有研究显示, 使用高氯酸为沉淀剂, 能达到较好的蛋白沉淀效果且色谱图杂峰较少[5, 6]。然而在实验中发现, 血清经高氯酸处理后久置, 在MTX的保留时间附近会出现杂峰, 且无法与目标峰分离, 导致检测结果偏差很大。其原因尚不清楚, 其他文献也未曾提及, 可能是由于高氯酸的强氧化性导致MTX的理化性质发生变化。因此样本经处理后须在30 min内上机检测。
临床上一般认为44 h点和68 h点的血清MTX浓度是反映MTX 在体内排泄情况的指标, 关系到甲酰四氢叶酸钙(CF)解救剂量和解救次数的选择, 44 h< 1 μ mol/L(0.45 ng/L)、68 h< 0.1 μ mol/L(0.045 ng/L)为无毒性浓度, 超过上述浓度应追加CF解救[8]。本研究建立的HPLC法检测限低、线性范围广, 能够满足临床需要。如有需要, 本法也可用于测定MTX鞘内注射后脑脊液中的MTX浓度。相对于血清, 脑脊液中干扰物极少, 样本能够不经提取直接进样, 可大大提高回收率和敏感性, 其临床实用性有待研究。FPIA最低检测浓度为0.01 μ mol/L(0.005 ng/L), 本研究HPLC法的最低检测浓度为0.025 ng/L, 表明FPIA在检测限方面有一定优势。然而FPIA的线性范围较小, 如遇到高浓度样本时需要稀释并重复检测, 这无疑会增加检测成本及实验时间。通过对62例血清样本的测定, 发现在HPLC线性范围内2种方法测定值的相关性良好且差异无统计学意义, 结果可以相互替代。同时HPLC法的用血量以及整个样本分析周期也与FPIA相当。故HPLC法可以替代FPIA用于临床实验室对MTX血药浓度的检测。
本研究综合国内外各方法优点, 建立了测定血清MTX浓度的HPLC法。该法样本前处理操作简便、回收率高、色谱峰重现性好、检测时间短。较FPIA而言, 更具有专一性强、成本低等优点, 适用于临床实验室对MTX化疗方案的监测及药动学的研究。
The authors have declared that no competing interests exist.
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