作者简介:王芳,女,1976年生,主管技师,主要从事临床检验工作。
目的 探讨胸水中的脂阿拉伯甘露聚糖(LAM)抗原对结核性胸膜炎的诊断价值,以获取一种诊断结核性胸膜炎的辅助指标。方法 收集胸水标本共96例,其中结核性胸膜炎46例,非结核性胸膜炎50例,采用双抗体夹心酶联免疫吸附试验(ELISA)检测胸水中的LAM抗原。结果 结核性胸膜炎胸水中LAM抗原阳性率为54%,非结核性胸膜炎胸水中LAM抗原阳性率为22%,二者差异有统计学意义( P<0.05)。结论 胸水中LAM抗原检测可作为结核性胸膜炎诊断的一项新指标。
Objective To investigate whether the determination of lipoarabinomannan (LAM) antigen in pleural fluid may be used as an indicator for the diagnosis of tuberculous pleurisy.Methods Double antibody sandwich enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) was performed to detect LAM antigen in 96 pleural fluid samples (46 patients with tuberculous pleurisy and 50 patients with non-tuberculous pleurisy).Results The positive rate of LAM antigen in pleural fluid with tuberculous pleurisy group was 54%, and the positive rate in pleural fluid with non-tuberculous pleurisy was 22%. There was a statistical difference between them( P<0.05).Conclusions LAM antigen could be used as a new indicator for the diagnosis of tuberculous pleurisy.
每年全球有50万的胸腔积液新发病例[1], 在中国结核性胸膜炎是引起胸腔积液最常见的原因。胸水病原学检查包括胸水涂片找抗酸杆菌和胸水结核分枝杆菌培养, 一般阳性报告率仅为5%, 不能满足临床需要。胸膜活检虽达到80%的检出率[2], 但有创伤性, 受到胸水量的影响。比较理想的生化指标包括γ -干扰素(IFN-γ )和腺苷酸脱氨酶(ADA), IFN-γ 费用高[3], 而ADA在结核高发区特异性不高[4]。脂阿拉伯甘露聚糖(lipoarabinomannan, LAM)是结核分枝杆菌细胞壁的重要组成部分, 血清中LAM抗体的检测对肺结核的诊断价值早就被公认[5, 6, 7]。近年来, 有国外学者探寻用酶联免疫吸附试验(ELISA)在尿液[8]、痰液[9]、脑脊液[10]中检测LAM抗原诊断结核病, 但目前国内未见这方面的报道。本研究采用美国Clearview TB ELISA试剂盒(货号:M913)检测了96例胸水中的LAM抗原, 评价其对结核性胸膜炎的诊断价值。
1. 标本来源
所有标本来自上海市肺科医院2010年1至6月收集的胸水。
2. 一般资料
结核性胸膜炎患者46例, 其中男33例、女13例, 年龄35~68岁, 平均(49± 6)岁; 非结核性胸膜炎患者50例, 包括肺癌36例、脓胸6例、慢性阻塞性肺部疾病(COPD)5例、间质性肺炎3例, 其中男32例、女18例, 年龄42~75岁, 平均(52± 7)岁。
3. 诊断标准
(1)有发热等结核中毒症状; (2)胸水以淋巴细胞为主的渗出液; (3)肺部有结核病灶; (4)抗结核治疗症状好转, 胸水吸收快; (5)胸水涂片或结核分枝杆菌培养阳性可确诊。具备(1)~(4)或(5)者进入观察组, 否则进入对照组。
1. 分组方法
患者按双盲法(经治医生和患者)进行LAM 抗原的检测。每位患者于治疗结束后依诊断标准决定其进入观察组或对照组。
2. 标本采集
临床医生严格按照无菌操作规程, 胸腔穿刺采集胸水, 置入肝素真空采血管, 及时送至检验科。待测胸水经2 000× g(湘仪L550)离心 15 min后, 取上清置-20 ℃冻存备用。
3. 试剂盒
试验采用美国Clearview TB ELISA试剂盒(货号:M913)。
4. 双抗体夹心ELISA
分别设空白孔、待测标本孔。在酶标包被板上待测标本孔中加入标本50 μ L, 加在酶标板孔的底部, 不触及孔壁, 轻轻晃动混匀。温育:用封板膜封板后置37 ℃温育30 min。洗涤:小心揭掉封板膜, 弃去液体, 甩干, 每孔加满洗涤液, 静置30 s后弃去, 如此重复5 次, 拍干。加酶:每孔加入酶标试剂50 μ L, 空白孔除外, 再温育洗涤1次。显色:每孔先加入显色剂A液50 μ L, 再加入显色剂B液50 μ L, 轻轻震荡混匀, 37 ℃避光显色15 min。终止:每孔加终止液50 μ L, 终止反应(此时蓝色立转黄色)。测定:空白孔作为对照调零, 450 nm 波长依序测量各孔的吸光度(A)值。测定应在加终止液后15 min 内进行。
采用SPSS 10.0统计软件包中的t检验和χ 2检验进行统计分析, P< 0.05为差异有统计学意义。
结核性胸膜炎组A值为0.8± 0.2, 高于非结核性胸膜炎组(0.3± 0.2, P< 0.01)。将非结核性胸膜炎组的平均A值的0.8± 2s作为阳性判断界值, 结核性胸膜炎组LAM阳性25例, 阳性率为54%; 非结核性胸膜炎组LAM阳性11例, 阳性率为22%, 两者差异有统计学意义(P< 0.05)。用此方法检测胸水中LAM抗原对结核性胸膜炎诊断的敏感性为54%(25/46), 特异性为78%(39/50)。
胸腔积液是临床常见体征, 感染性疾病、结缔组织病、变态反应性疾病及恶性肿瘤均可出现胸腔积液, 而常规的实验室方法用于鉴别诊断胸腔积液时存在各种缺陷, 不能满足要求, 因此筛选新的、效果好的、且能够方便应用于临床的鉴别诊断胸腔积液性质的指标, 具有较大的实用意义。检测结核分枝杆菌特异性抗原更有可能发展成为结核病早期、快速、敏感、特异, 并且适宜在发展中国家推广应用的新型诊断指标, 因而也越来越受到人们的重视。
近十几年来人们关注到一类细菌胞壁糖脂抗原— — LAM。LAM是结核分枝杆菌细胞壁的主要成分, 在结核分枝杆菌与宿主的相互作用中起着关键作用并影响细胞、体液免疫的发生与发展。目前为止, 至少有2类LAM 即manLAM 和araLAM。前者来自结核分枝杆菌H37Rv Erdman株, 而后者来自结核分枝杆菌H37Ra, 前者较后者多了甘露糖帽化结构。LAM的生物合成过程是:甘露糖基连接到磷脂酰肌醇形成2~6个甘露糖基以及20个甘露糖基和2~3个阿拉伯糖基, 甘露糖基和阿拉伯糖基进一步阿拉伯糖基化形成LAM。此过程虽然很明确, 但机制尚不清楚。LAM可通过对巨噬细胞、树突状细胞、T细胞的相互作用介导细胞免疫, LAM引起的体液免疫则是由于LAM有9个单克隆抗体结合表位, 故其为强免疫原, 且其特异性强, 能有效刺激机体产生IgG型的抗LAM抗体。
国内外均有学者以LAM 作抗原用ELISA检测活动性结核病患者血清的抗LAM抗体, 并取得了较为满意的效果。关于检测血清和胸水中LAM IgG来诊断结核病和结核性胸膜炎的报道, 国内外都很多, 血清标本检测LAM IgG的特异性为89%~95%, 敏感性为55.5%~87.2%[11], 胸水标本检测诊断结核性胸水的特异性为93.8%, 敏感性为91.8%[12], 但LAM抗原检测的临床应用国内未见有报道。通过本研究, 我们认为LAM抗原检测方法敏感性高、特异性强、操作简便, 可作为结核性胸膜炎诊断的一项辅助指标, 适用于基层结核病实验室应用。
LAM是分枝杆菌细胞壁的重要组成部分, 是属特异性抗原, 具有较强的免疫原性, 因LAM抗原的检测, 对不同的分枝杆菌特异性不同, 病情不同, 其结果差异较大, 是一项有用的辅助诊断手段, 对活动性肺结核, 尤其对结核性胸膜炎诊断有较好的价值, 可作为结核性胸膜炎诊断的一项新指标。
The authors have declared that no competing interests exist.
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